CD4+辅助性T细胞具有高度的异质性与可塑性,可分化为功能各异的多个亚群,是调控免疫应答方向的核心细胞群。传统研究中,不同实验室往往采用差异化的标志物组合与圈门策略鉴定Th亚群,导致跨研究数据可比性差、结果难以交叉验证。同时,完整的T细胞分析通常需要同时覆盖分化状态、功能亚群、激活增殖等多个维度,传统多管染色方案不仅样本消耗大,也难以在单细胞水平实现多维度信息的关联分析。此外,黏膜相关恒定T细胞(MAIT/mNKT)的常规检测高度依赖Vα7.2特异性抗体,进一步提升了检测的试剂门槛与实验成本。
OMIP-030以全表面标志物染色为核心设计理念,通过单管多色panel实现人外周血中已命名CD4+Th全亚群、Treg与CD8+T细胞的同步分型,配套提出无需Vα7.2抗体的mNKT/MAIT细胞替代鉴定策略。方案同步整合记忆分化、激活状态与增殖水平评估维度,无需胞内染色即可完成T细胞多维免疫表型解析,已在新鲜与冻存PBMC样本中完成性能验证。
OMIP-030统一了Th细胞的分群逻辑与鉴定标准,有效解决了不同实验室间标志物组合与圈门策略不一致、数据难以横向比对的行业痛点。全表面染色的设计简化了实验流程、降低了样本消耗,为自身免疫、感染免疫、疫苗研发等多个领域的T细胞研究提供了可重复、可比对的标准化检测工具。
T细胞亚群的精准分型是解析免疫应答机制、评估疾病免疫状态的核心基础。OMIP-030作为一套专为人类PBMC样本开发的标准化T细胞表型分析方案,在单管全表面染色的体系下实现了从谱系鉴定到功能状态的全方位覆盖,为T细胞相关的基础与临床研究提供了高效、统一的全景分析工具。
| Target | Fluorochrome | Function | abinScience Recommendation |
|---|---|---|---|
| Live Dead | Blue | Viability | — |
| CD20 | PE-Cy5.5 | B cell exclusion | 查看CD20抗体 |
| CD3 | QD605 | T cells lineages 辅助T细胞标记 |
查看CD3抗体 |
| CD4 | BV510 | 查看CD4抗体 | |
| CD8 | eFluor 650 | 查看CD8抗体 | |
| CD45RA | BV570 | Naïve/memory | — |
| CD197(CCR7) | PE-CF594 | 查看CD197抗体 | |
| CD25 | BV711 | Treg | 查看CD25抗体 |
| CD127 | APC-eFluor 780 | 查看CD127抗体 | |
| CCR10 | APC | CD4+T cell | — |
| CD183(CXCR3) | FITC | 查看CD183抗体 | |
| CD185(CXCR5) | biotin+Streptavidin-PE-Cy7 | 查看CD185抗体 | |
| CD194(CCR4) | PE | 查看CD194抗体 | |
| CD196(CCR6) | BV786 | 查看CD196抗体 | |
| CD161 | PerCP-Cy5.5 | mNKT/MAITcells | 查看CD161抗体 |
| CD38 | eFluor 450 | Activation marker | 查看CD38抗体 |
| Ki67 | Alexa Fluor 700 | Proliferation | — |

图1. OMIP-030圈门策略总览
排除细胞黏连体、死细胞及B细胞,圈出CD3+CD20-总T细胞。
通过CD4与CD8标记将总T细胞划分为CD4+T细胞与CD8+T细胞两大谱系,分别向下游开展精细化亚群解析。
完成CD8+T细胞的记忆分化分型,同步实现mNKT/MAIT细胞的替代法鉴定。
先鉴定调节性T细胞(Treg),再依次完成常规CD4+T细胞的记忆分化分型、Tfh细胞分群及全谱系Th功能亚群划分。
1. 经FSC-W/FSC-A与SSC-W/SSC-A双参数圈选去除细胞黏连体,通过死活染料排除死细胞后,进一步以CD3、CD20标记圈定CD3+CD20-总T细胞群体;再经CD4/CD8双参数将总T细胞拆分为CD4+T细胞与CD8+T细胞两大独立谱系,分别开展下游亚群分析。

2. CD8+T细胞谱系分群
分化与增殖支路:以CD45RA/CD197(CCR7)将CD8+T细胞分为CD45RA+初始/效应群与CD45RA-记忆群;初始/效应群经CCR10、CD185、CD194逐级纯化后,匹配Ki67染色评估细胞增殖水平;记忆群经CD161/CD197设门后,以CD197表达区分出中央记忆(Tcm)与效应记忆(Tem)CD8+T细胞。
mNKT/MAIT鉴定支路:从总CD8+T细胞独立设门,不经过分化分型路径;经CD45RA/CD161筛选出CD45RA-CD161+群体,依次通过CD194、CD197、CCR10、CD127多标记验证表型,最终圈定CD161+CD196+(CCR6+)的mNKT/MAIT细胞,实现无需Vα7.2抗体的替代鉴定。

3. CD4+T细胞谱系分群
首先通过CD25与CD127的表达差异,从总CD4+T细胞中圈出CD25highCD127low的调节性T细胞(Treg),剩余群体为常规CD4+T细胞;Treg细胞可进一步通过CD45RA与CD197的组合,划分为初始Treg与记忆Treg两个亚群。
对常规CD4+T细胞,采用与CD8+T细胞一致的CD45RA/CD197分型逻辑,完成初始、效应、中央记忆、效应记忆四类分化亚群的鉴定,所有亚群均配套CD38染色,用于对应评估各分化阶段的免疫激活水平。
在记忆CD4+T细胞群体中,以CD185(CXCR5)阳性圈出滤泡辅助性T细胞(Tfh),并通过CD183(CXCR3)与CD196(CCR6)的组合,进一步细分为Th1-like Tfh、Th2-like Tfh与Th17-like Tfh三类功能亚群。

4. 全谱系Th功能亚群逐级鉴定
对CD185阴性的常规记忆CD4+T细胞,以CD196(CCR6)为一级分群标志,先划分为CCR6-与CCR6+两大细胞群体,再结合CD194(CCR4)、CD183(CXCR3)与CCR10的表达逐级细分:

1. 全表面标记单管覆盖,统一Th亚群分群标准
CD4+辅助性T细胞亚群的鉴定依赖于核内转录因子/特征性细胞因子,但二者均需胞内/核内破膜染色,操作流程复杂、样本损耗大,难以在单管中实现多亚群全景分析。OMIP-030仅通过表面趋化因子受体的组合搭配,即可在单管中完成CD4+Th亚群(Th1、Th2、Th9、Th17、Tfh、GM-CSF+Th)与Treg细胞的精准鉴定。方案建立了标准化的标志物组合与圈门逻辑,有效解决了不同研究间分群策略不统一、数据难以横向比对的行业痛点;同时全表面染色的设计简化了实验流程,降低了样本处理难度,兼容新鲜与冻存PBMC样本。
2. 创新MAIT细胞替代鉴定策略,降低检测技术门槛
针对mNKT/MAIT细胞常规检测高度依赖Vα7.2特异性抗体的局限,OMIP-030创新性地提出了基于CD161与趋化因子受体表达特征的替代鉴定方案。该策略无需额外配置Vα7.2抗体,仅利用panel内已有的表面标志物组合即可实现MAIT细胞的识别,在拓宽试剂选择空间、降低实验成本的同时,也为缺乏特异性抗体的研究场景提供了可行的检测路径。
3. 分型-分化-功能三维整合,实现T细胞状态全景解析
OMIP-030并非仅停留在细胞亚群的谱系鉴定层面,而是在单管体系中同步整合了三个维度的免疫信息:通过CD45RA/CCR7解析T细胞的记忆分化阶段,通过CD38评估细胞免疫激活水平,通过Ki67反映细胞增殖状态。这种多维度耦合的设计,使研究者可在单细胞水平关联细胞亚群身份与功能状态,更全面地解析免疫应答过程中T细胞的动态变化,大幅提升了单管实验的信息产出效率。
OMIP-030是一套专为人类PBMC样本设计的标准化T细胞全亚群表型分析方案。它以全表面标志物染色为核心特色,在单管中实现了从谱系鉴定、记忆分化到激活增殖状态的全方位解析,同时创新性地提供了MAIT细胞的替代鉴定路径。该方案为CD4+T细胞多亚群分析提供了一套标准化的标志物组合与分群范式,全表面染色的设计简化了样本处理流程,统一的圈门逻辑也提升了不同研究间的数据可比性,为基础免疫机制研究、临床免疫监测及疫苗研发等场景提供了可靠的技术参考。
[1] Wingender, G. and Kronenberg, M. (2015), OMIP-030: Characterization of human T cell subsets via surface markers. Cytometry, 87: 1067-1069. https://doi.org/10.1002/cyto.a.22788

24小时产品查询

扫一扫关注我们

专属渠道经理