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自然杀伤性细胞解决方案 NK cell Panel

发布日期: 2025-03-17 访问次数: 23

 

自然杀伤细胞(NK细胞)起源于骨髓中的造血干细胞(HSCs),通过多阶段分化形成功能成熟的亚群。各阶段伴随关键表面标志物的动态变化,可通过流式细胞术进行精准分型与发育追踪。NK细胞在先天免疫中发挥关键作用,能够快速杀伤病毒感染细胞和肿瘤细胞,同时通过分泌细胞因子(如IFN-γ)调节适应性免疫。

Fig 1. Mechanisms leading to impaired cytotoxicity in NK cells within the tumor microenvironment (DOI: 10.1016/j.lfs.2023.121997)

分化阶段 特征与标志物
Lin⁻CD34⁺ HSCs 造血干细胞,表达CD45RA,具有多向分化潜能
LMPP 淋巴系祖细胞,表达CD38、CD7、CD10、CD127,趋向淋巴谱系
CLP 共同淋巴祖细胞,表达CD122(IL-2Rβ),定向NK谱系
iNK 未成熟NK细胞,表达CD117、CD56、CD94,向CD56bright或CD56dim分化

Fig 2. Surface markers defining immature and mature NK cells in mouse and human

CD56bright 与 CD56dim 亚群功能解析

人NK细胞根据CD56表达水平分为两大功能亚群,分布和功能差异显著:

  • CD56brightCD16⁻:主要分布于淋巴组织,表达高水平趋化因子受体(如CCR7),以分泌细胞因子(如IFN-γ、IL-10、TNF-α)为主,发挥免疫调节作用。
  • CD56dimCD16⁺:占外周血NK细胞的90%以上,表达杀伤性受体(如KIR、NKG2D),通过颗粒酶/穿孔素和ADCC(抗体依赖性细胞毒性)直接杀伤靶细胞。

人NK细胞分型与功能特征

NK细胞类型 标志物 主要功能
iNK (CD56brightCD16⁻) CCR5, CCR7, CXCR3, CXCR4, NKG2A, NKG2D, NCR, DNAM-1 趋化迁移、细胞因子分泌
mNK (CD56dimCD16⁺) CXCR1, CXCR2, CXCR4, KIR, NKG2D, DNAM-1 杀伤病毒感染细胞和肿瘤细胞

小鼠与人类NK细胞对照分析

小鼠NK细胞与人类NK细胞功能相似,但标志物差异明显。小鼠常用CD11b和CD27分型,结合NK1.1和Ly49系列受体进行亚群鉴定。

NK细胞类型 标志物 功能
iNK (CD11b⁻CD27⁺) CCR5, CCR7, NKp46, CD49b 细胞因子分泌、增殖潜能
mNK (CD11b⁺CD27⁻) NK1.1, CD49b, S1PR5, Ly49 成熟杀伤功能

NK细胞流式检测完整流程

流式细胞术是解析NK细胞亚群及功能状态的核心技术。以下为优化后的完整操作流程,确保高灵敏度和准确性。

  • 1. 样本准备
    • 样本收集:从外周血(EDTA抗凝管)分离PBMCs(Ficoll密度梯度离心),或从小鼠脾脏/骨髓制备单细胞悬液(酶解或机械研磨)。
    • 红细胞裂解:用1×红细胞裂解液(蒸馏水稀释)处理5-10分钟,400g离心5分钟,弃上清。
    • 洗涤:用PBS + 2% FBS洗涤2次,400g离心5分钟。
    • 计数与调整:用血细胞计数仪调整浓度至1-2×10⁶ cells/mL(100 µL/管)。
    • Fc阻断:加入Fc受体阻断剂(如Human Fc Block或Mouse CD16/CD32抗体,货号:FMK22710),4°C孵育10分钟,减少非特异性结合。
  • 2. 抗体标记
    • 抗体选择:人NK细胞常用CD3(排除T细胞)、CD56、CD16、NKG2D、KIR;小鼠用CD3、NK1.1、CD49b、CD11b、CD27。建议预先滴定抗体。
    • 孵育:每10⁶细胞加入1-5 µL抗体(100 µL体积),4°C避光孵育30分钟。
    • 洗涤:加1-2 mL流式缓冲液(PBS + 2% FBS),400g离心5分钟,弃上清,重复2次。
  • 3. 染色与固定(可选)
    • 死细胞排除:加入7-AAD或PI(按说明书浓度),室温孵育5分钟,区分活细胞。
    • 胞内染色:检测IFN-γ或颗粒酶B时:
      • 固定:4%多聚甲醛,10分钟,400g离心。
      • 通透:0.1% Triton X-100,5分钟。
      • 标记:加入胞内抗体(如anti-IFN-γ),4°C孵育30分钟,洗涤2次。
  • 4. 数据采集
    • 仪器设置:匹配荧光团与激光器(如FITC用488 nm,APC用633 nm),调整PMT电压。
    • 对照:设置未染色、单染和同型对照,用于补偿和特异性验证。
    • 上机:转移至流式管,采集50,000-100,000个事件,流速控制在200-500 events/s。
    • 门控:FSC/SSC圈定淋巴细胞,CD3⁻筛选NK细胞,再细分亚群。
  • 5. 数据分析与特定亚群分析
    • 软件:用FlowJo或Cytobank导入FCS文件。
    • 门控策略
      • 总淋巴细胞门:FSC/SSC散点图圈定淋巴细胞,排除碎片。
      • 活细胞门:用7-AAD⁻排除死细胞。
      • NK细胞门:人用CD3⁻CD56⁺筛选总NK细胞,小鼠用CD3⁻NK1.1⁺或CD49b⁺。
      • 特定亚群分析
        • 人CD56brightCD16⁻:在CD3⁻CD56⁺门中,筛选CD56highCD16⁻细胞,评估其细胞因子分泌潜能(结合IFN-γ染色)。
        • 人CD56dimCD16⁺:在CD3⁻CD56⁺门中,筛选CD56lowCD16⁺细胞,检测杀伤受体(如NKG2D、KIR)表达水平。
        • 小鼠iNK (CD11b⁻CD27⁺):在CD3⁻NK1.1⁺门中,筛选CD11b⁻CD27⁺细胞,代表未成熟亚群,具增殖能力。
        • 小鼠mNK (CD11b⁺CD27⁻):在CD3⁻NK1.1⁺门中,筛选CD11b⁺CD27⁻细胞,反映成熟杀伤功能。
    • 荧光补偿:基于单染对照调整荧光溢出。
    • 结果解读
      • CD56bright比例升高:提示免疫调节增强,可能与炎症或淋巴组织激活相关。
      • CD56dim比例主导:正常外周血特征,杀伤功能占优,异常降低可能与肿瘤微环境抑制有关。
      • 小鼠CD11b⁻CD27⁺增多:提示NK细胞处于发育早期或增殖状态。
      • NKG2D/KIR表达变化:高表达提示杀伤活性增强,低表达可能与免疫逃逸相关。
    • 输出:生成散点图(如CD56 vs. CD16、CD11b vs. CD27)、直方图,计算亚群比例和MFI。

注意事项

  • 全程避光操作,避免荧光猝灭。
  • 样本制备后2小时内上机,防止细胞凋亡。
  • 用40-70 µm滤网去除团聚细胞。
  • 定期校准仪器,确保数据一致性。

推荐流式抗体产品目录

Target Clone CAT. Species
CD3 OKT3 HY057107 Human
CD16 3G8 HY386107 Human
CD56 huN901-DM1 HY309107 Human
NKG2D SAA0098 HB123107 Human
TIGIT SAA0153 HS739107 Human
NK1.1 PK136 MC598107 Mouse
CD49b SAA0018 HB772127 Human

参考文献

[1] Vivier E, et al. Functions of natural killer cells. Nat Immunol. 2008.
[2] Freud AG, Caligiuri MA. Human natural killer cell development. Immunol Rev. 2006.
[3] Morvan MG, Lanier LL. NK cells and cancer: innate immunity and immunotherapy. Nat Rev Cancer. 2016.
[4] Wang X, et al. Tumor microenvironment–driven NK cell dysfunction. Life Sci. 2023. DOI:10.1016/j.lfs.2023.121997