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小鼠脾脏单细胞悬液制备

发布日期: 2025-11-28 访问次数: 168

一、实验前材料准备

手术器械:包括眼科剪、眼科镊等。

培养皿:一次性塑料培养皿。

滤网:70 μm200目滤网用于过滤细胞团块,保证得到单细胞悬液。

离心管:15 mL50 mL的离心管,用于收集和离心细胞。

PBS 或培养基:用于清洗细胞。

红细胞裂解液:用于去除红细胞。

备注:如果细胞后续用于培养请将材料消毒,保证无菌。

二、小鼠脾脏获取

颈椎脱臼法处死小鼠,75%乙醇浸泡5 min,取出小鼠置于操作台上,左腹侧朝上。小鼠左腹侧中部剪开小口,撕开皮肤,暴露腹壁,可见红色长条状脾脏(图1)。从脾脏下侧提起腹膜,剪开后上翻,暴露出脾脏。用镊子提起脾脏,眼科剪分离脾脏下面的结缔组织,取出脾脏,并浸泡于干净的PBS溶液中。

 

1. 小鼠脾脏位置

三、脾脏单细胞悬液制备

1. 研磨法

5 mL注射器活塞/柱塞的扁平末端部分或用研磨棒以温和画圆的方式研磨脾脏,碾磨至无明显红色结团。

70 μm200目滤网过滤细胞,再用适量PBS/培养基冲洗滤网,收集细胞与离心管中。300-500 g离心5 min,弃上清。

用适量红细胞裂解液重悬细胞,室温裂解2-3 min后,马上加入10 mLPBS终止裂解,300-500 g离心5 min,弃上清。

PBS或培养基重悬细胞,计数,调整细胞浓度到1×107/mL

2. 吹打法

2.5 mL的注射器吸取PBS,小心插入脾脏中吹打,至脾脏细胞完全被吹打干净,观察只剩余白色的结缔组织和脂肪组织为止,镊子夹取剩余的白色组织在PBS中轻轻润洗。

70 μm200目滤网过滤细胞,再用适量PBS/培养基冲洗滤网,收集细胞与离心管中。300-500 g离心5 min,弃上清。

用适量红细胞裂解液重悬细胞,室温裂解2-3 min后,马上加入10 mLPBS终止裂解,300-500 g离心5 min,弃上清。

PBS或培养基重悬细胞,计数,调整细胞浓度到1×107/mL

 

2. 小鼠脾脏FSC/SSC结果图

四、注意事项

研磨力度尽量轻柔,避免造成过多机械性死亡的细胞。

收集的脾脏细胞如需进一步培养,请注意无菌操作;如果只是做普通的流式实验,则可以不考虑无菌环境。

红细胞裂解最好现配现用,裂解时间以实验过程中裂红的效果来判断。

细胞计数可以使用血细胞计数板或者自动细胞计数仪来计数细胞。

为保持细胞活性,减缓代谢,尽量全程低温操作(在冰上或4℃环境)。

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